小鼠腹水瘤细胞

小鼠腹水瘤细胞是研究腹腔恶性肿瘤生物学行为、腹水形成机制及抗肿瘤药物研发的关键实验模型，源自小鼠腹腔内发生的恶性肿瘤（如淋巴瘤、胃癌腹腔转移灶等），因能在腹腔内自主增殖并诱导腹水产生，且保留肿瘤细胞的恶性表型（如侵袭性、免疫逃逸能力），成为肿瘤学领域研究腹腔转移与恶性腹水的理想工具，为解析腹腔肿瘤病理机制与开发治疗方案提供核心支撑。

从细胞来源与生物学特征来看，其获取与特性具有鲜明的 “腹腔导向性"。自然来源上，可从自发性腹腔肿瘤小鼠的腹水中分离 —— 当小鼠腹腔内肿瘤细胞增殖到一定程度，会破坏腹腔内环境稳态，诱导血管通透性增加，促使液体与细胞成分渗出形成腹水，通过腹腔穿刺抽取腹水，经离心纯化即可获得高纯度的肿瘤细胞；实验室构建则多通过将体外培养的肿瘤细胞（如肝癌细胞、结肠癌细胞）接种至小鼠腹腔，诱导细胞适应腹腔微环境并增殖形成腹水，进而获得所需细胞系。在生物学特征上，这类细胞具有典型的恶性肿瘤属性：一是无限增殖能力，体外培养时可长期传代且增殖速率稳定，通常 24-36 小时完成一次分裂；二是腹腔侵袭性，能黏附于腹腔脏器表面（如腹膜、肠壁）并侵袭周围组织，模拟临床腹腔肿瘤转移过程；三是腹水诱导能力，通过分泌血管内皮生长因子（VEGF）、基质金属蛋白酶（MMPs）等物质，破坏腹膜屏障完整性，促进液体渗漏，形成恶性腹水，这一特征与临床恶性腹水患者的病理过程高度相似。

在细胞形态与增殖特性方面，其形态因原始肿瘤类型略有差异，但整体呈现恶性肿瘤细胞的共性特征。显微镜下观察，细胞多呈圆形或椭圆形，部分细胞因侵袭特性呈不规则形，胞体大小不均（直径约 8-15μm），胞质丰富且可能含颗粒或空泡，细胞核大而畸形，核仁明显且数量增多，核染色质分布紊乱，这些形态特征是判断细胞恶性程度的重要依据。增殖方式上，体外培养时以悬浮生长为主，少数细胞可轻微贴壁，培养体系中细胞分布均匀，无明显聚集现象；体内接种后则表现为 “腹腔定植 - 增殖 - 腹水形成" 的递进过程 —— 细胞先黏附于腹膜表面建立定植位点，随后快速增殖形成细胞团，同时诱导腹水产生，随着腹水增多，细胞可在腹水中自由扩散，进一步加重病情。此外，这类细胞还具有 “耐药性易感性"，长期培养或药物处理后易出现耐药基因表达升高，可用于肿瘤耐药机制研究。

体外培养条件方面，其培养体系需满足快速增殖与恶性表型维持的需求，整体操作相对简便?；∨嘌Ｓ?RPMI-1640 或 DMEM，添加 10%-20% 胎牛血清以提供充足的营养物质（如氨基酸、生长因子），部分细胞系需补充谷an酰胺（2mmol/L）或 β- 巯基乙醇，以维持细胞代谢活性与抗氧化能力。培养环境需严格控制：温度维持在 37℃恒温，CO?浓度为 5%，确保培养基 pH 稳定在 7.2-7.4 之间，这一 pH 范围能最大限度保留细胞的增殖活性与侵袭能力。由于细胞增殖速率快，需定期监测细胞密度，当密度达到 1×10?-5×10?个 /mL 时及时传代，传代时按 1:3-1:5 的比例接种至新鲜培养基，避免密度过高导致营养耗尽或代谢废物（如乳酸）积累，影响细胞功能。同时，培养过程中需严格无菌操作，因细胞悬浮生长时对污染（尤其是细菌、真菌污染）的抵抗力较弱，污染后易快速出现形态异常与增殖停滞。

在科研应用价值上，其是肿瘤学与药理学研究的 “多功能模型"。在腹腔肿瘤机制研究中，可用于探究肿瘤腹腔转移的关键步骤 —— 通过体外黏附实验、侵袭实验，观察细胞与腹膜细胞的相互作用及对基质的降解能力，解析 MMPs、整合素等分子在转移过程中的作用；也可通过体内接种模型，研究腹水形成的分子机制，如 VEGF 调控血管通透性的具体通路，为开发抑制腹水形成的药物提供靶点。在抗肿瘤药物研发领域，其是理想的药物筛选模型：体外实验中，将候选药物加入培养体系，通过 MTT 法、CCK-8 法检测细胞存活率，或通过流式细胞术检测细胞凋亡率，快速评估药物的抗腹腔肿瘤活性；体内实验中，将药物注入荷瘤小鼠腹腔，观察腹水减少量与肿瘤细胞增殖抑制效果，评估药物的体内治疗效果，同时可研究药物在腹水中的浓度分布与代谢规律，优化给药方案。在肿瘤免疫研究方面，可用于评估免yi治疗效果 —— 如将免疫检查点抑制剂（PD-1/PD-L1 抑制剂）与细胞共培养，或注射给荷瘤小鼠，观察免疫细胞对肿瘤细胞的杀伤效率，为腹腔肿瘤的免yi治疗提供实验依据；此外，还可用于构建肿瘤疫苗，通过处理细胞获取肿瘤抗原，激发机体特异性免疫应答，探索肿瘤预防与治疗的新策略。