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MOLT-4人急性淋巴母细胞性白血病细胞
产品简介:

MOLT-4人急性淋巴母细胞性白血病细胞,悬浮生长,具 T 淋巴细胞表型,对hua疗药物敏感,是白血病机制研究、hua疗药物筛选及免yi治疗研发的常用模型。

产品型号:试剂盒

更新时间:2025-10-30

厂商性质:代理商

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产品介绍

MOLT-4人急性淋巴母细胞性白血病细胞

MOLT-4人急性淋巴母细胞性白血病细胞是从一名 19 岁男性急性淋巴母细胞性白血病(ALL)患者的外周血中分离纯化并建立的永生化白血病细胞系,因精准复刻 T 系急性淋巴母细胞性白血病的形态特征、免疫表型及病理行为,尤其对多种抗白血病药物具典型敏感性、能模拟白血病细胞的增殖与凋亡调控机制,成为研究 T-ALL 发病机制、抗白血病药物筛选、耐药机制探索及相关治疗研发的核心实验模型,为白血病基础研究与临床转化提供了标准化工具。

一、核心生物学特性

  1. 形态与免疫表型特征

MOLT-4 细胞具急性淋巴母细胞的典型形态,在倒置显微镜下观察为圆形或类圆形,细胞质少且呈嗜碱性(因胞内核糖体丰富),细胞核大而圆、占细胞体积的 2/3 以上,核仁明显(1-2 个),染色质呈细颗粒状,与临床 T-ALL 患者骨髓中的白血病细胞形态高度一致。该细胞稳定表达 T 淋巴细胞特异性标志物:CD2(T 细胞活化共受体)、CD3(T 细胞受体复合物核心成分)、CD4(辅助性 T 细胞标志物)、CD7(早期 T 细胞标志物),同时表达白血病相关抗原 CD99,不表达 B 细胞标志物 CD19 及髓系细胞标志物 CD13,明确其 T 系淋巴母细胞的属性,与 T-ALL 的免疫分型特征wan全匹配。

  1. 增殖与功能特性

MOLT-4 细胞具白血病细胞的恶性增殖特征:一是高增殖活性,在标准培养条件下种群倍增时间约为 24-30 小时,传代后可快速恢复增殖能力,且长期传代仍能维持稳定的增殖速率;二是锚着非依赖性生长,为wan全悬浮生长细胞系,细胞均匀分散于培养基中,少量可形成松散小聚团(直径≤3 个细胞,不影响活性);三是药物敏感性,对临床常用抗白血病药物(如长春新碱)高度敏感,药物处理后可出现典型的凋亡特征(如细胞皱缩、染色质凝聚、凋亡小体形成),且凋亡率与药物浓度呈剂量依赖性,这一特性使其成为抗白血病药物活性评价的理想模型。此外,细胞还保留部分 T 淋巴细胞的功能特征,如经 PHA(植物血凝素)刺激后可轻微活化,表达少量 IL-2 受体,模拟白血病细胞的异?;罨刺?/span>

  1. 遗传学特征

MOLT-4 细胞携带 T-ALL 相关的遗传学改变,如染色体数目异常(多为超二倍体)及部分基因表达异常:如原癌基因 MYC 表达上调(参与细胞恶性增殖调控)、抑癌基因 p53 功能正常(因此对 DNA 损伤类抗白血病药物敏感,p53 通路激活可诱导细胞凋亡),与部分 T-ALL 患者的遗传学特征相似,为研究白血病的分子致病机制提供了遗传学背景明确的模型。

二、主要研究应用场景

  1. T-ALL 病理机制研究

MOLT-4 细胞是解析 T-ALL 发病分子机制的核心工具。例如,通过高通量测序对比 MOLT-4 细胞与正常 T 淋巴细胞的基因表达差异,可筛选出 T-ALL 相关的差异表达基因(如 NOTCH1、TLX1),进一步通过基因敲除 / 过表达实验验证其功能 —— 如敲除 NOTCH1 后,MOLT-4 细胞的增殖速率下降 40%、凋亡率升高 30%,明确 NOTCH1 信号通路在 T-ALL 细胞增殖中的驱动作用。此外,利用该细胞研究白血病细胞的代谢重编程机制,发现 MOLT-4 细胞存在糖酵解增强现象(Warburg 效应),通过抑制糖酵解酶(如己糖激酶)可显著抑制细胞增殖,揭示代谢异常在 T-ALL 中的作用,为代谢靶向治疗提供理论基础。

  1. 抗白血病药物筛选与耐药机制探索

MOLT-4 细胞因药物敏感性明确,广泛应用于白血病抗白血病药物筛选与耐药机制研究。在药物筛选中,通过 CCK-8 法、MTT 法检测候选药物(如新型生物碱类、靶向小分子化合物)对细胞增殖的抑制效果,计算半数抑制浓度(IC50),评估药物活性;例如,对天然产物衍生物进行筛选时,若化合物使 MOLT-4 细胞的 IC50 低于 10μmol/L,且凋亡率超过 50%,则提示其具潜在抗白血病活性。在耐药机制研究中,通过长期低剂量药物诱导建立 MOLT-4 耐药细胞株(如长春新碱耐药株 MOLT-4/VCR),对比耐药株与亲本株的基因表达差异,发现多药耐药基因 MDR1(编码 P - 糖蛋白)表达上调,验证 P - 糖蛋白介导的药物外排是耐药产生的关键机制,为逆转白血病耐药提供靶点(如使用 MDR1 抑制剂维拉帕米可部分恢复耐药细胞的药物敏感性)。

  1. 白血病相关治疗研发

MOLT-4 细胞也用于白血病相关治疗策略的研发与验证,尤其在 CAR-T 细胞治疗领域:因细胞表达 CD3、CD4 等 T 细胞标志物,可作为 CD3 靶向或 CD4 靶向 CAR-T 细胞的体外杀伤靶细胞,通过检测 CAR-T 细胞对 MOLT-4 细胞的杀伤率(如 LDH 释放法、流式细胞术),评估 CAR-T 细胞的活性;例如,CD3 靶向 CAR-T 细胞对 MOLT-4 细胞的杀伤率可达 70% 以上,且能有效抑制细胞增殖,为 CAR-T 细胞治疗的临床前研究提供数据支持。此外,该细胞也用于免疫检查点抑制剂(如 PD-1/PD-L1 抑制剂)的活性评价,检测药物对白血病细胞免疫逃逸的阻断效果。

三、细胞培养关键要点

  1. 培养基选择与配置

MOLT-4 细胞常规使用 RPMI-1640 培养基培养,该培养基含细胞增殖所需的必需氨基酸、维生素及微量元素,可满足其高增殖活性的需求;需添加 10%-15% 胎牛血清(FBS,选择低内毒素批次,避免刺激细胞过度活化)、1% 抗菌制剂(预防细菌污染)。培养基 pH 需严格控制在 7.2-7.4,使用前在 37℃水浴锅中预热至室温,避免低温刺激导致细胞应激,影响药物敏感性。

  1. 培养环境控制

细胞需置于 37℃、5% CO?、湿度 95% 以上的恒温培养箱中培养:37℃为细胞代谢与酶活性的最适温度,可维持正常的增殖速率与药物敏感性;5% CO?通过调节培养基中碳酸氢盐平衡维持 pH 稳定,避免 pH 异常导致细胞形态改变;95% 湿度可防止培养基过度蒸发,避免渗透压升高导致细胞脱水。培养过程中需每天观察细胞状态,轻轻摇晃培养瓶使细胞均匀分布,避免细胞沉降导致局部密度过高;通过台盼蓝染色法每周检测 1-2 次细胞活力,确?;盥饰衷?85% 以上,活力过低会影响实验结果的重复性。

  1. 传代与冻存操作

传代时机选择细胞密度达到 1×10?-2×10?个 /mL 时(密度过高易导致营养匮乏、活力下降):将培养瓶中的细胞悬液轻轻吹打均匀(力度需轻柔,避免损伤细胞),按 1:3-1:5 的比例转移至新培养瓶,加入新鲜培养基后放回培养箱(悬浮细胞无需消化,直接分装即可),每 2-3 天传代一次。

冻存需选用对数生长期且活力良好的细胞(活率≥90%),冻存液为 90% FBS+10% DMSO(DMSO 可降低细胞内冰晶形成,减少冻存损伤);将细胞悬液与冻存液按 1:1 混合均匀,分装至冻存管并标注细胞名称、代次、冻存日期;遵循梯度降温程序:4℃放置 30 分钟→-20℃放置 1 小时→-80℃过夜→转入液氮长期保存。复苏时,冻存管从液氮取出后快速放入 37℃水浴融化(时间不超过 1 分钟,避免细胞长时间低温损伤);加入 5 倍体积预热的培养基,1000rpm 离心 5 分钟去除 DMSO(DMSO 对细胞有一定毒性);弃去上清液,用新鲜培养基重悬细胞后接种到培养瓶中,复苏后 24 小时内不换液,让细胞充分适应环境,提高存活率。

四、实验使用注意事项

  1. MOLT-4 细胞属于人源肿瘤细胞系,操作时需严格遵守生物安全二级(BSL-2)实验室规范,佩戴无菌手套、口罩与实验服,避免细胞接触皮肤或黏膜;实验结束后需对实验器材(如移液器、培养瓶、离心管)、台面用 75% 乙醇彻di消毒,实验废液需经灭菌处理后排放,防止细胞污染与生物安全风险。

  1. 开展抗白血病药物实验或细胞杀伤实验时,需使用对数生长期细胞,确保细胞状态一致,减少实验误差;设置空白对照组(仅培养基)、溶剂对照组(如药物溶解用的 DMSO)及阳性对照组(如已知活性的抗白血病药物长春新碱),排除溶剂干扰并验证实验体系的有效性;药物处理时需根据预实验确定合适的浓度范围,避免浓度过高导致细胞过度死亡或过低无明显效应。

  1. 长期培养过程中,需每传代 10-15 代通过 STR 分型检测验证细胞身份,对比细胞系标准 STR 图谱,避免与其他悬浮生长的白血病细胞系(如 Jurkat 细胞)交叉污染;每传代 5-8 代需通过流式细胞术检测 CD3、CD4 等 T 细胞标志物表达,通过 CCK-8 法检测对长春新碱的敏感性,防止细胞发生遗传漂变导致表型改变(如标志物丢失、耐药性增强),影响实验结果的准确性。

  1. 细胞传代次数建议不超过 30 代,超过后细胞易出现增殖速率下降、药物敏感性降低、遗传学特征改变等问题,需从液氮中复苏早期冻存的低代次细胞(如第 5-10 代),保证实验结果的稳定性与重复性;培养过程中避免频繁更换培养基或剧烈摇晃培养瓶,防止细胞应激导致凋亡率升高;同时避免使用含血清浓度过高的培养基(超过 15%),防止细胞过度增殖导致功能紊乱。



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