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RT4膀胱癌细胞
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RT4膀胱癌细胞源自人膀胱移行细胞乳头状癌组织,呈上皮样贴壁生长,保留膀胱癌生物学特征,是膀胱癌发病机制研究、抗肿瘤药物筛选及耐药性探索的常用细胞模型。

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更新时间:2025-10-22

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RT4膀胱癌细胞

RT4膀胱癌细胞是膀胱癌基础研究与药物研发领域的经典细胞模型,源自 58 岁男性患者的膀胱移行细胞乳头状癌组织,经原代培养与克隆筛选建立。作为保留膀胱移行细胞癌核心生物学特征的细胞系,它不仅具备典型的上皮样肿瘤形态与特异性标志物表达,还能模拟体内膀胱癌的增殖、侵袭及药物应答过程,尤其在低级别膀胱移行细胞癌(膀胱癌常见亚型,占比约 70%)的机制研究中具有不可替代的优势。相较于高级别膀胱癌细胞系(如 T24、UM-UC-3),RT4 细胞的恶性程度较低,增殖速率平缓,更贴近临床中早期膀胱癌的生物学行为,为研究膀胱癌的发生发展、分化调控及药物敏感性提供了理想工具。

从生物学特性来看,RT4 膀胱癌细胞呈现鲜明的膀胱移行细胞乳头状癌形态与功能特征。光学显微镜下,细胞呈多边形或短梭形的上皮样形态,排列紧密但极性紊乱(区别于正常上皮细胞),部分区域可见细胞堆叠生长,体现肿瘤细胞的无序增殖特征;细胞核呈圆形或椭圆形,位于细胞中央或偏位,染色质分布不均,核仁明显且数量增多(多为 2-3 个),偶见双核或多核细胞,但核异型性程度低于高级别膀胱癌细胞,符合低级别乳头状癌的病理特征。功能层面,该细胞的核心优势是保留膀胱移行细胞癌的特异性标志物 —— 高表达细胞角蛋白 8/18(膀胱移行上皮特异性蛋白)与尿ji酶型纤溶酶原激活剂(uPA,与肿瘤侵袭相关),同时低表达增殖标志物 Ki-67(阳性率约 20%-30%),这一表达模式与临床低级别膀胱癌组织高度一致;此外,RT4 细胞具有一定的侵袭与迁移能力(可通过 Transwell 实验检测),但侵袭速率显著低于高级别膀胱癌细胞,能模拟早期膀胱癌的局部浸润特征,而非远处转移行为。生长特性上,RT4 细胞为贴壁依赖性生长,最适培养条件为 37℃、5% CO?恒温恒湿环境,pH 维持在 7.2-7.4;增殖速率中等,倍增时间约为 50-60 小时,对数生长期细胞密度可达 4×10?-6×10?个 /cm2,且无明显接触抑制特性(融合度达 100% 后仍可继续增殖一段时间),这是肿瘤细胞与正常细胞的关键区别之一。

在培养操作与质量控制层面,RT4 膀胱癌细胞的培养需重点关注 “维持肿瘤表型与标志物稳定性",避免因培养条件不当导致细胞特性漂移。培养基选择上,常规使用含 10% 胎牛血清的 McCoy's 5A 培养基(或 DMEM/F12 混合培养基),血清需经过支原体检测与肿瘤细胞兼容性验证,确保无有害微生物且富含肿瘤细胞生长所需的营养因子(如 EGF、FGF);无需额外添加生长因子或激素,基础培养基即可满足细胞增殖需求,若长期使用低糖培养基,可能导致细胞增殖速率下降或标志物表达改变。培养操作时,可使用普通塑料培养皿(无需包被),细胞贴壁能力较强;传代流程需注意控制消化时间:先用无菌 PBS 缓冲液冲洗细胞表面 2 次,去除残留培养基,加入 0.25% 的细胞消化液后 37℃孵育 3-4 分钟,待细胞边缘收缩、间隙增大时,立即加入含血清的培养基终止消化,轻柔吹打形成单细胞悬液(避免过度吹打导致细胞损伤),按 1:4-1:6 的比例接种至新培养皿,24-36 小时内即可完成贴壁与增殖启动。质量控制方面,需定期开展多维度检测:通过台盼蓝染色确保细胞活力≥90%;通过免疫细胞化学染色验证细胞角蛋白 8/18(阳性率≥95%)、uPA(阳性率≥80%)与 Ki-67(阳性率 20%-30%)的表达,确认细胞肿瘤表型稳定;通过 STR 分型鉴定排除交叉污染(膀胱癌细胞系易与其他上皮来源癌细胞混淆);若用于药物筛选,还需通过 CCK-8 法检测细胞对标准抗癌药物(如shun铂、吉西他滨)的敏感性,确保细胞药物应答符合低级别膀胱癌特征(shun铂 IC??约为 5-10μM)。

在科研应用领域,RT4 膀胱癌细胞凭借 “低级别膀胱癌表型" 的优势,在多个研究方向中发挥核心作用。膀胱癌发病机制研究中,它是解析早期膀胱癌分化与增殖调控的理想模型 —— 科研人员可通过对比 RT4 细胞与正常膀胱上皮细胞(如 HCV-29)的基因表达差异,筛选低级别膀胱癌的关键驱动基因,例如发现 RT4 细胞中 FGFR3 基因突变率较高(与临床低级别膀胱癌突变特征一致),通过基因编辑技术修复该突变后,可观察到细胞增殖减缓、侵袭能力下降,明确 FGFR3 突变在早期膀胱癌发生中的驱动作用;同时,研究 RT4 细胞中 Wnt/β-catenin、PI3K/Akt 等信号通路的活性,可解析低级别膀胱癌的增殖调控机制。抗肿瘤药物筛选与敏感性研究方面,RT4 细胞是评估低级别膀胱癌药物疗效的关键工具 —— 在新型靶向药物(如 FGFR3 抑制剂)研发中,可通过体外给药检测细胞活力、凋亡率及通路抑制情况,筛选对低级别膀胱癌有效的药物;同时,利用 RT4 细胞构建药物耐药模型(如长期低剂量shun铂诱导),可探索膀胱癌早期耐药机制(如 ABC 转运蛋白上调、DNA 损伤修复基因激活),为开发逆转耐药的联合治疗方案提供实验依据。膀胱癌分化与复发研究中,RT4 细胞的低恶性程度使其成为研究膀胱癌分化调控的shou选模型 —— 通过诱导分化剂(如wei A 酸)处理,观察细胞形态(是否向正常上皮分化)、标志物表达(细胞角蛋白 8/18 是否上调、Ki-67 是否下调)及增殖速率变化,解析分化诱导治疗在低级别膀胱癌中的作用机制;此外,该细胞可用于研究膀胱癌复发相关因素(如肿瘤干细胞比例、微环境信号调控),为降低早期膀胱癌高复发率(术后 5 年复发率约 50%-70%)提供理论基础。

不过,使用 RT4 膀胱癌细胞需注意其局限性。该细胞系仅代表低级别膀胱移行细胞乳头状癌,无法模拟高级别膀胱癌(恶性程度高、易转移)或其他病理类型膀胱癌(如鳞癌、腺癌)的生物学特征,研究不同类型膀胱癌时需搭配对应细胞系(如 T24 代表高级别癌)补充验证。作为单一细胞系,它无法wan全体现临床膀胱癌的分子异质性(如基因突变谱、基因表达亚型差异),实验结果需结合临床样本(如膀胱癌组织芯片)进一步验证。此外,长期传代(超过 30 代)可能导致细胞出现恶性程度升高(如核异型性增强、侵袭能力上升)或药物敏感性改变,需定期冻存早期传代细胞(如 P5-P10 代),并在实验前验证细胞表型与功能,确保实验结果的可靠性。


 

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